研究背景：肝细胞癌（HCC）是全球癌症死亡的主要原因。临床通常采用肝切除术、消融治疗、肝移植、介入灌注疗法及化疗等常规治疗方案。然而，肝癌死亡率仍呈逐年上升趋势。在肝癌研究领域，据报道DCR3 mRNA和蛋白在HepG2和SMCC7721（肝癌）细胞中高表达，而在LO2（正常肝）细胞中几乎检测不到。因此，DCR3有望成为小分子疗法的理想靶点，通过增强药物向肿瘤部位的递送效率，显著提升肿瘤治疗效果。四氧化三铁（Fe3O4）纳米颗粒作为最传统的磁性纳米材料，在生物医学领域尤其是靶向药物/基因递送系统中备受关注，这得益于其卓越的磁学性能、生物相容性、低毒性、可生物降解性及其他优势特性。很多研究表明磁性微机器人在生物医学应用中的潜力日益凸显，为癌症治疗提供了精准靶向、可控药物递送和创新治疗策略。研究内容：该研究提出了一种兼具磁驱运动与化学趋化行为的双响应纳米颗粒，该颗粒能够沿血液和组织中的DCR3蛋白梯度定向迁移，从而有效靶向体内肝脏肿瘤部位（图1）。通过聚乙二醇修饰的30 nm Fe3O4（Fe NPs）（购于南京东纳生物，货号：Mag3200）利用粒子间的磁相互作用，在特殊磁场控制下形成集群实现磁靶向；将铁纳米粒子（Fe NPs）与DCR3抗体偶联得到Fe NPs-DCR3，进一步提升了药物向肿瘤部位递送的精准性。并通过体内体外实验证明Fe NPs-DCR3相比于单独的Fe NPs具有...
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内毒素也称为脂多糖（lipopolysaccharides，LPS），是革兰氏阴性菌外膜的主要成分，所有革兰氏阴性菌的生长、分裂与死亡过程，都会释放内毒素；而内毒素具有“微量致病”的毒性特点，不仅干扰细胞生长、蛋白活性等研发生产过程，也给人体健康造成极大的威胁，极低浓度内毒素即可诱导哺乳动物发生热原反应和休克[1]。因此各国药典都对医药产品的内毒素含量设定了严格限值，内毒素的去除和检测成为生物制品生产工艺中的重要环节，也是保障产品安全性的核心步骤。不同革兰氏阴性菌来源的LPS通常由三个区域组成：O-特异性多糖链、核心多糖和脂质A（如图1所示），其中脂质A是内毒素生物活性和毒性主要来源。在生物药物研发及生产的过程中，内毒素的去除方法的选择需结合内毒素的特性（如稳定性、溶解性、分子量等）和应用场景[2]，如液体样品中内毒素去除，会根据内毒素的分子量大小选择超滤法；生产设备、实验器皿等常选择高温、强酸、强碱等手段破坏脂质A的结构等。 图1.内毒素结构示意图 东纳生物围绕“精准捕获”的核心思路，利用脂质A是内毒素最保守的区域及磁珠超顺磁性的特点，以脂质A为靶点，开发出MagBeads®内毒素去除磁珠，可有效清除生物样品中各种革兰氏阴性菌释放出的LPS。MagBeads®内毒素去除磁珠工作流程如图2所示，操作简单省时，仅需配合磁分离工具即可高效去除内毒素；无需昂贵耗材...
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N-羟基磺基琥珀酰亚胺（Sulfo-NHS）活化磁珠表面修饰有亲水性聚合物涂层，以及用于蛋白或核酸偶联的Sulfo-NHS官能团。与传统的羧基、氨基磁珠相比，该磁珠无需活化，其表面的Sulfo-NHS基团可直接与蛋白上的伯胺（-NH2，如赖氨酸侧链或N-末端）高效反应形成酰胺键，降低了操作难度和时间（通常可在2-3小时内完成）。Sulfo-NHS酯的水溶性比传统NHS酯更好，整个标记反应在温和的水溶液体系中进行，避免了使用有机溶剂（如DMSO/DMF），最大程度地保持了蛋白的天然构象和生物活性，减少了因标记过程导致的蛋白变性和失活。同时，由于标记效率和纯化效率高，整个过程非特异性吸附和损失极少，用户可以使用微量的起始蛋白完成标记，尤其适用于来源困难、表达昂贵或非常珍贵的蛋白样品。偶联后的磁珠可用于下游免疫分析或免疫沉淀试验。 产品特点 · 磁珠功能基团：磺基琥珀酰亚胺，与伯胺基团(-NH2)定向结合· 高偶联量：抗体偶联量10 mg/mg· 易操作：无需活化操作，与蛋白/抗体轻松偶联· 兼容性强：可与含伯胺基的蛋白、多肽、核酸、药物等共价偶联，偶联后结构稳定不易脱落· 较低非特异性结合：磁珠表面进行特殊处理，除伯胺基团外不会进行其他杂质吸· 多用途：（1）偶联抗体后可用于IP、CoIP、Chip、蛋白纯化等；（2）可配合磁...
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外泌体提取试剂盒（磁珠法）开学季优惠七五折外泌体是一种具有磷脂双分子层的细胞外囊泡（EVs），直径在30-150纳米之间，由细胞响应各种环境刺激或自我激活而分泌，广泛存在于血液、尿液、脑脊液等体液中。自20世纪80年代被发现以来，外泌体因携带蛋白质、核酸、脂质等生物活性分子，成为细胞间通讯的“信使”，在药物递送、临床诊断和疾病治疗如抗肿瘤、组织修复（如妊娠纹修复）、神经退行性疾病、抗纤维化、抗衰老、脊髓损伤修复、毛发再生等领域具有广泛应用前景。目前，在国际临床试验注册网站www.clinicaltrial.gov上登记的Extracellular Vesicles (EVs)相关临床研究已达150余项。然而，宿主细胞来源的外泌体原料中含有大量细胞碎片、脂蛋白及超聚体等杂质，为外泌体的高效分离带来了挑战。目前外泌体分离主要包括超速离心、PEG沉淀法、尺寸排阻色谱（SEC）、免疫亲和捕获法、以及磁珠法。磁珠法的基本原理是利用磁性颗粒偶联外泌体膜特异性配体，对外泌体进行快速分离。通常该方法得到的外泌体回收率高（ 50%）、纯度高（杂质去除率 95%）。传统的磁珠亲和捕获法先在超速离心的基础上富集EVs，接着利用外泌体特异性抗体（如CD9、CD63、CD81）修饰的磁珠与富集的EVs共同孵育，利用免疫的抗原与抗体特异性结合的方法富集外泌体（Exosome Isolation Kit Pa...
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